Nötropenik Hastalarda Akım Sitometrinin Ayırıcı Tanıdaki Yeri
Araştırma Makalesi
DOI:
https://doi.org/10.5281/zenodo.7908431Anahtar Kelimeler:
nötropeni, lenfosit, monosit, akım sitometrisi, miyelomonositik antijenlerÖzet
Giriş: Akış sitometrisi ile immüno-fenotipleme esas olarak hematolojik neoplazilerin tanısında kullanılsa da immün sistemdeki değişikliklerin ortaya konmasında da önemli katkılar sağlar. Hematolojik neoplazmalar ve bağışıklık sistemi bozuklukları ile ilişkili olarak nötrofil sayısında değişiklikler meydana gelebileceğinden, nötropenik hastalarda da akım sitometri çalışmaları yapılmaktadır.
Amaç: Bu çalışma kapsamında, farklı nedenlerle oluşan nötropenide lenfosit, granülosit ve monosit alt tipleri ile miyelo-monositik antijenlerin monositler ve nötrofiller üzerindeki ekspresyonlarının hastalar ve sağlıklı gönüllülerin sonuçları ile karşılaştırılması amaçlandı.
Yöntem: Bu çalışmaya kurumumuza başvuran toplam 24 hasta ve yaş ve cinsiyet uyumlu 13 sağlıklı gönüllü alındı. Hasta grubu izole nötropenisi bulunan bireylerden oluştu. Muayene bulguları, lenf nodu boyutu, dalak boyutu ve enfeksiyon bulguları, laboratuvar parametreleri, CRP düzeyi ve periferik yaymadaki patolojik bulgular kaydedildi. Hastalardan alınan toplam kan, akım sitometrisi ile işlendi.
Bulgular: Nötrofil/lenfosit (N/L)ortalama floresan yoğunluk oranı hasta grubunda kontrol grubuna göre yüksek bulundu (p=0.022). Lökosit sayısı ile CD16 ifade eden atipik monosit yüzdesi arasında pozitif korelasyon bulundu (p=0.033). Trombosit sayısı ile N/L ortalama floresan yoğunluk oranı arasında (p=0.411) ve trombosit sayısı ile nötrofiller üzerindeki CD11b yüzdesi arasında (p=0.026) negatif bir korelasyon bulundu. Lökositlerde saptanan nötrofil yüzdesi ve doğal öldürücü hücre yüzdesi (CD30/CD56+) hasta grubunda istatistiksel olarak anlamlı derecede düşüktü (sırasıyla p=0.008, p=0.001).
Sonuç: Bu çalışmanın sonuçlarına bakıldığında, izole nötropenili hastaların lenfosit ve monosit alt tiplerinde klinik olarak anlamlı değişiklikler gözlendiği söylenebilir. Çoğunlukla nötrofillerle ilgili olan N/L yan saçılma oranında granülasyon bulundu.
Referanslar
Mithoowani S, Cameron L, Crowther MA. Neutropenia. CMAJ. 2022;194(49):E1689. doi:10.1503/cmaj.220499.
Spoor J, Farajifard H, Rezaei N. Congenital neutropenia and primary immunodeficiency diseases. Crit Rev Oncol Hematol. 2019;133:149-162. doi:10.1016/j.critrevonc.2018.10.003
Frater JL. How I investigate neutropenia. Int J Lab Hematol. 2020;42(1):121-132. doi:10.1111/ijlh.13210
Atallah-Yunes SA, Ready A, Newburger PE. Benign ethnic neutropenia. Blood Rev. 2019;37:100586. doi:10.1016/j.blre.2019.06.003
Escrihuela-Vidal F, Laporte J, Albasanz-Puig A, Gudiol C. Update on the management of febrile neutropenia in hematologic patients. Rev Esp Quimioter. 2019;32(2):55-58.
Manohar SM, Shah P, Nair A. Flow cytometry: principles, applications and recent advances. Bioanalysis. 2021;13(3):181-198. doi:10.4155/bio-2020-0267
Robinson JP. Flow cytometry: past and future. Biotechniques. 2022;72(4):159-169. doi:10.2144/btn-2022-0005
Delmonte OM, Fleisher TA. Flow cytometry: Surface markers and beyond. J Allergy Clin Immunol. 2019;143(2):528-537. doi:10.1016/j.jaci.2018.08.011
Steinway SN, LeBlanc F, Loughran TP Jr. The pathogenesis and treatment of large granular lymphocyte leukemia. Blood Rev. 2014;28(3):87-94. doi:10.1016/j.blre.2014.02.001
Lamy T, Loughran TP Jr. How I treat LGL leukemia. Blood. 2011;117(10):2764-74. doi:10.1182/blood-2010-07-296962
Watters RJ, Liu X, Loughran TP Jr. T-cell and natural killer-cell large granular lymphocyte leukemia neoplasias. Leuk Lymphoma. 2011;52(12):2217-25. doi:10.3109/10428194.2011.593276
Zhang J, Xu X, Liu Y. Activation-induced cell death in T cells and autoimmunity. Cell Mol Immunol. 2004;1(3):186-92.
Swerdlow SH, Campo E, Pileri SA, et al. The 2016 revision of the World Health Organization classification of lymphoid neoplasms. Blood. 2016;127(20):2375-90. doi:10.1182/blood-2016-01-643569
Moosic KB, Ananth K, Andrade F, Feith DJ, Darrah E, Loughran TP Jr. Intersection Between Large Granular Lymphocyte Leukemia and Rheumatoid Arthritis. Front Oncol. 2022;12:869205. doi:10.3389/fonc.2022.869205
Lundell R, Hartung L, Hill S, Perkins SL, Bahler DW. T-cell large granular lymphocyte leukemias have multiple phenotypic abnormalities involving pan-T-cell antigens and receptors for MHC molecules. Am J Clin Pathol. 2005;124(6):937-46.
Chandra A, Zhang F, Gilmour KC, et al. Common variable immunodeficiency and natural killer cell lymphopenia caused by Ets-binding site mutation in the IL-2 receptor γ (IL2RG) gene promoter. J Allergy Clin Immunol. 2016;137(3):940-2.e4. doi:10.1016/j.jaci.2015.08.049
Gay D, Kwon O, Zhang Z, et al. Fgf9 from dermal γδ T cells induces hair follicle neogenesis after wounding. Nat Med. 2013;19(7):916-23. doi:10.1038/nm.3181
van Oostveen JW, Breit TM, de Wolf JT, et al. Polyclonal expansion of T-cell receptor-gamma delta+ T lymphocytes associated with neutropenia and thrombocytopenia. Leukemia. 1992;6(5):410-8.
Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia. Blood. 2016;127(20):2391-405. doi:10.1182/blood-2016-03-643544
Westers TM, Ireland R, Kern W, et al. Standardization of flow cytometry in myelodysplastic syndromes: a report from an international consortium and the European LeukemiaNet Working Group. Leukemia. 2012;26(7):1730-41. doi:10.1038/leu.2012.30
Ogata K. Diagnostic flow cytometry for low-grade myelodysplastic syndromes. Hematol Oncol. 2008;26(4):193-8. doi:10.1002/hon.857
Cherian S, Moore J, Bantly A, et al. Flow-cytometric analysis of peripheral blood neutrophils: a simple, objective, independent and potentially clinically useful assay to facilitate the diagnosis of myelodysplastic syndromes. Am J Hematol. 2005;79(3):243-5. doi:10.1002/ajh.20371
Licona-Limón I, Garay-Canales CA, Muñoz-Paleta O, Ortega E. CD13 mediates phagocytosis in human monocytic cells. J Leukoc Biol. 2015;98(1):85-98. doi:10.1189/jlb.2A0914-458R
Alhan C, Westers TM, Cremers EM, et al. The myelodysplastic syndromes flow cytometric score: a three-parameter prognostic flow cytometric scoring system. Leukemia. 2016;30(3):658-65. doi:10.1038/leu.2015.295.
Boxer L, Dale DC. Neutropenia: causes and consequences. Semin Hematol. 2002;39(2):75-81. doi:10.1053/shem.2002.31911
Boxer LA, Newburger PE. A molecular classification of congenital neutropenia syndromes. Pediatr Blood Cancer. 2007;49(5):609-14. doi:10.1002/pbc.21282
İndir
Yayınlanmış
Nasıl Atıf Yapılır
Sayı
Bölüm
Lisans
Telif Hakkı (c) 2023 Acta Medica Ruha
Bu çalışma Creative Commons Attribution 4.0 International License ile lisanslanmıştır.
